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Publication #EENY-309

La Escama Lobada de Laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan (Insecta: Hemiptera: Sternorrhyncha: Coccoidea: Kerriidae)1

F. W. Howard, Robert Pemberton, Avas Hamon, Greg S. Hodges, Catharine M. Mannion, David McLean, Y Jeanette Wofford2

Introducción

Una especie de insecto de escama que es nueva en la Florida es potencialmente una de las plagas más devastadoras de arboles y arbustos en la historia del estado. La escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan (Hemiptera: Sternorrhyncha: Coccoidea: Kerriidae), un insecto de escama nativo de la India y Sri Lanka, se encontró por primera vez en la Florida en agosto de 1999 por personal del Departamento de Agricultura y Servicios para Consumidores, División de Industria de Plantas (DIP)(Hamon 2001). La identificación de la especie por Avas Hamon de DIP fue confirmada por D. R. Miller del laboratorio de Entomología Sistemática, Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, Beltsville, Maryland. Este registro fue sobre hibisco (Hibiscus rosa-sinensis) en el pueblo de Davie (Condado de Broward). La planta fue destruida por el personal del DIP.

Figure 1. 

Hembras maduras de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Las plantas en la vecindad a esta planta infestada fueron inspeccionadas sin encontrar P. pseudolobata. Sin embargo, la especie fue encontrada otra vez en el 2000 sobre un caucho (Ficus benjamina) en Davie, sobre icaco (Chrysobalanus icaco) en Weston (Condado de Broward), y sobre icaco en dos sitios en Miami (Condado de Miami- Dade). En el 2001, la especie de insecto de escama se encontró en 11 sitios en el condado de Broward y en seis sitios en el Condado de Miami-Dade. En diciembre del 2001, los inspectores del DIP encontraron P. pseudolobata en Lake Worth (Condado de Palm Beach). A partir de octubre del 2002, P. pseudolobata se ha registrado en sitios desde Lake Worth al norte hasta Homestead (Condado de Miami-Dade) en el sur, esto es, una distancia de 128 km, y desde la costa hasta 28 km al interior. Después de encontrarse este insecto de escama en la Florida, unos ejemplares de la misma especie fueron encontrados en la Colección Estatal de la Florida de Artrópodos los cuales fueron colectados en 1992.

Descripción y biología

Las hembras adultas de P. pseudolobata, con la escama miden alrededor de 1.5–2.0 mm de largo y casi lo mismo de ancho. La escama tiene dos pares de lóbulos prominentes. Al ojo experto, la forma de 'X' de este insecto de escama es apreciable, hasta sin magnificación. La escama es extremamente dura y quebradiza, lustrosa y de un color granate-castaño, pero frecuentemente está cubierta por una capa de fumagina por lo cual aparece ser de un color negro-opaco. La hembra de la escama lobada de laca, como es el caso con cóccidos en general, se desarrolla durante dos instares, y muda al tercer estadio, lo cual es la hembra adulta. Los primeros instares son ovalados-alargados y alrededor de 0.4 mm de largo. La forma pseudolobata característica se desarrolla en el segundo instar, y es más pronunciada en la adulta. No se han observado los machos de esta especie en la Florida.

Figure 2. 

Primer instar de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Como las hembras adultas de los insectos de escama no tienen alas, no juegan ningún papel en la dispersión de poblaciones para ocupar nuevas plantas hospedantes. Los insectos de escamas dependen en dispersión pasiva del primer instar vía corrientes de aire. Foresis (transporte por pájaros y otros animales) puede ser de alguna importancia en algunas especies. Sin duda, el movimiento de plantas hospedantes infestadas entre áreas urbanas es un factor clave para la dispersíon los insectos de escama.

La familia de los insectos de laca

La escama lobada de laca pertenece a la familia de cóccidos de laca, Kerriidae, la especie mejor conocida de la cual es el verdadero cóccido de laca, Kerria lacca (Kerr). La escama de este se ha utilizado para hacer goma laca y productos similares. Pero la mayoría de especies de esta familia, incluyendo P. pseudolobata, no producen ningún material de valor comercial. El nombre científico especifico, pseudolobata, se refiere a las cuatro proyecciones prominentes, o lóbulos, de esta escama, y el nombre vernáculo 'escama lobada de laca' puede ser aplicado a esta especie.

De las 28 familias de insectos de escama (súperfamilia Coccoidea) reconocidas por Miller y Ben-Dov (2002), 11 son representadas por especies las cuales son nativas a la Florida (Aclerdidae, Asterolecaniidae, Diaspididae, Cerococcidae, Coccidae, Conchaspidae, Eriococcidae, Kermesidae, Margarodidae, Ortheziidae, y Pseudococcidae.) No hay ninguna especie de Kerriidae nativa de la Florida y tierras adyacentes. La familia Kerriidae está limitada sobre todo a las latitudes tropicales, con una minoría de especies presentes en áreas desérticas de baja latitud. De las 87 especies descritas, 64 se encuentran en el Hemisferio Oriental. De las especies nativas del Hemisferio Occidental, 13 son registradas para América del Sur, seis para México (dos de las cuales son registradas para el suroeste de los Estados Unidos), tres registradas solamente en el suroeste de los EE.UU. y una especie en Jamaica (Ben-Dov 2002).

Los efectos sobre las plantas hospedantes

Paratachardina pseudolobata se ha encontrado sobre todo infestando plantas leñosas dicotiledóneas. Infesta las ramitas y ramas pequeñas y los troncos de menos de 2 cm de diámetro. No se ha encontrado sobre follaje.

Figure 3. 

Ramita de palo de cera infestada de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Sobre las plantas hospedantes altamente susceptibles, los insectos de escamas estan abarrotados, formando una masa contigua la cuál aparece como una costra oscura llena de bultos. Se han contado hasta 19 hembras maduras por 100 mm2 en ramitas de palo de cera (Myrica cerifera), una planta hospedante altamente susceptible. Infestaciones densas se asocian con la muerte de ramas de algunas especies de plantas; en casos severos, arbustos y árboles pequeños altamente infestados se han muerto. El palo de cera está especialmente propenso a tener infestaciones densas y morir por los efectos de la escama pseudolobata. Algunas especies de plantas parecen tolerar las infestaciones densas, pero eso puede ser ilusorio, pues todavía no se saben los efectos de tales infestaciones a largo plazo.

Figure 4. 

Fumagina sobre hojas de mango, resultado indirecto de una infestación de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Figure 5. 

Palo de cera en bosque natural (izquierda) y como cerca viva (derecho), muertos por causa de infestaciones de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Rango de plantas hospedantes de la escama

Este insecto de escama se ha encontrado solamente sobre plantas dicotiledóneas, sobre una especie conífera (enebro rojo del sur, Juniperus silicicola) y sobre una palma (palma datilera miniatura, Phoenix roebelenii). A partir de octubre del 2002, más de 120 especies en 44 familias de plantas leñosas han sido identificadas como plantas hospedantes en la Florida (Cuadros 1 & 2). Estas incluyen 39 especies nativas a la Florida. La mayoría de las plantas hospedantes exóticas se cultivan como árboles o arbustos ornamentales, o como árboles frutales. Algunas de estas especies son sumamente importantes en los paisajes urbanos como árboles de sombra, árboles ejemplares, o cercas vivas. Algunas familias de plantas, notablemente Fabaceae, Myrtaceae, y Moraceae, son bien representadas por especies que sirven como plantas hospedantes, pero eso puede estar relacionado con su abundancia en el paisaje o debido a otro prejuicio. Las plantas en diferentes sitios han sido expuestas a las infestaciones por diferentes períodos, y por eso, los niveles de infestación son variables. Diferencias en susceptibilidad no han sido determinadas en experimentos. Sin embargo, ciertas especies parecen ser altamente susceptibles, incluyendo algunas especies nativas, e. g., palo de cera, icaco (Chrysobalanus icaco), mangle botón (Conocarpus erectus), higüero estrangulador (Ficus aurea), myrsine (Myrsine guianensis), laurel rojo (Persea borbonia), y café-silvestre (Psychotria nervosa); plantas ornamentales exóticas, e. g., ucar (Bucida buceras), laurel de la India (Ficus microcarpa), caucho (F. benjamina); y árboles frutales, e. g., lychee (Litchi chinensis), mango (Mangifera indica), y carambola (Averrhoa carambola).

Figure 6. 

Ramita de mango infestada de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.


Credit:

Fotografía: F. W. Howard, University of Florida.


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Expansión potencial en la distribución

El potencial de que este insecto se disperse y ocupe aún más territorio en el hemisferio occidental es especialmente alto para áreas cálidas y donde hay importación a un nivel significante de plantas vivas desde Florida, e. g., Puerto Rico y otras localidades del Caribe, California, y Hawaii. La invasión de áreas naturales es una preocupación primordial. Un examen rápido de varios montecillos de árboles de madera dura en el Condado de Broward reveló que habían infestaciones densas en diversas especies en áreas grandes. La presencia de infestaciones densas 28 km al interior, eso es, casi en las orillas de los Everglades, implica que la vegetación de esta área natural vasta está amenazada. La mayoría de las plantas hospedantes nativas identificadas en Florida también están distribuidas en la Región Caribeña, y si el insecto fuese introducido a Puerto Rico y otros países caribeños, las áreas naturales de esta región también serían amenazadas.

Prospectos para el manejo de la plaga

No se ha publicado virtualmente nada sobre la biología y el manejo de esta especie. Esta ha llegado rápidamente a ser una plaga de mayor importancia en el sureste de la Florida, y es urgente el acelerar las investigaciones sobre ella. Raramente hemos encontrado insectos parasíticos que ataquen a P. pseudolobata, y concluimos que estos no ofrecen control biológico significante. Resultados no publicados de experimentos llevados a cabo por la Universidad de Florida, Centro de Investigaciones y Enseñanza de Fort Lauderdale, mostraron que un remojo de las raíces con el insecticida imidacloprid controló efectivamente a P. pseudolobata infestando árboles grandes de caucho (Ficus benjamina). Estudios adicionales se llevan a cabo para refinar este método, y para hacer pruebas de la efectividad de aceites parafínicos además de otros métodos químicos. Como se pronostica que un alto porcentaje de árboles y arbustos llegarán a estar infestados con este insecto en áreas urbanas al igual que en áreas naturales de la Florida, estamos investigando el control biológico como la única opción a largo plazo.

Referencias seleccionadas

Chong J-H, Roda AL, Mannion CM. 2008. Mortality of the lobate lac scale Paratachardina pseudolobata (Hemiptera: Kerriidae) at near or below freezing temperatures. Florida Entomologist, 91 (4). (14 February 2014)

Hamon A. (2001). Lobate lac scale, Paratachardina lobata lobata (Chamberlin) (Hemiptera: Kerriidae). Pest Alert. (14 February 2014)

Howard FW, Pemberton RW. 2003. The lobate lac scale, a new pest of trees and shrubs in Florida: implications for the Caribbean Region. Proceedings of the Caribbean Food Crops Society 39: 91-94.

Howard FW, Steinberg B. 2005. Root drenches and topical insecticide treatments for control of the lobate lac scale, Paratachardina lobata (Chamberlin). Proceedings of the Florida State Horticultural Society 118: 314-31.

Howard FW, Pemberton RW, Hodges GS, Steinberg B, McLean D, Liu H. 2006. Host plant range of lobate lac scale, Paratachardina lobate, in Florida. Proceedings of the Florida State Horticultural Society 119: 398-408.

Kondo T, Gullan PJ. 2007. Taxonomic review of the lac insect genus Paratachardina Balachowsky (Hemiptera: Coccoidea: Kerriidae), with a revised key to genera of Kerriidae and description of two new species. Zootaxa 1617: 1-41.

Miller DR, Ben-Dov Y. 2002. ScaleNet (14 February 2014)

Pemberton RW, Nguyen R, Winotai A, Howard FW. 2006. Host acceptance trials of Kerria lacca (Kerriidae) parasitoids from northern Thailand on the pest lobate lac scale (Paratachardina lobata) (Kerriidae) in Florida. Florida Entomologist 89: 336-339.

Tables

Table 1. 

Host list of lobate lac scale in southern Florida (from Howard et al. 2006). (* indicates species native to Florida)

Angiosperms: dicotyledons

 

Acanthaceae

 

Graptophyllum pictum (L.)

 

Justicia brandegeana Wasshausen & L. B. Smith

 

Pachystachys lutea Nees

 

Ruellia brittoniana E. Leonard

 

Aceraceae

 

*Acer rubrum L.

 

Anacardiaceae

 

Mangifera indica L.

 

Metopium toxiferum (L.) Krug & Urban

 

Pseudospondias microcarpa (A. Richard) Engler

 

Rhus copallinum L.

 

Schinus molle L.

 

Schinus terebinthifolius Raddi

 

Spondias mombin L.

 

Toxicodendron radicans (L.) Kuntze

 

Annonaceae

 

Annona cherimola Miller x A. squamosa L.

 

*Annona glabra L.

 

Annona muricata L.

 

Annona reticulata L.

 

Annona squamosa L.

 

Cananga odorata (Lamarck ) J. D. Hooker & T. Thomson

 

Aquifoliaceae

 

Ilex cassine L.

 

*Ilex vomitoria Aiton

 

Araliaceae

 

Schefflera actinophylla (Endlicher) Harms

 

Schefflera elegantissima (Veitch ex Masters) Lowry & Frodin

 

Asteraceae

 

Ambrosia artemisiifolia L.

 

*Baccharis halimifolia L.

 

Bidens alba (L.) de Candolle

 

Flaveria linearis Lagasca

 

Montanoa grandiflora Alaman ex de Candolle

 

Pluchea carolinensis (Jacquin) G. Don

 

Tridax procumbens L.

 

Verbesina virginica L.

 

Begoniaceae

 

Begonia sp.

 

Bignoniaceae

 

Amphitecna latifolia (Miller) A. Gentry

 

Dolichandrone spathacea (L. f.) Schumann

 

Tecoma stans (L.) Humboldt, Bonpland and Kunth

 

Tecoma capensis (Thunberg) Spach

 

Burseraceae

 

*Bursera simaruba (L.) Sargent

 

Capparaceae

 

*Capparis cynophallophora L.

 

Caprifoliaceae

 

Viburnum sp.

 

Casuarinaceae

 

Casuarina cunninghamiana Miguel

 

Casuarina equisetifolia L.

 

Celtidaceae

 

*Celtis laevigata Willdenow

 

*Trema micranthum (L.) Blume

 

Chrysobalanaceae

 

*Chrysobalanus icaco L.

 

Licania tomentosa (Bentham) Fritsch

 

Clusiaceae

 

Calophylum brasiliense Cambessédes

 

Calophyllum calaba L.

 

Calophyllum inophyllum L.

 

Clusia lanceolata Cambessèdes

 

*Clusia rosea Jacquin

 

Garcinia mestonii F.M.Bailey

 

Garcinia prainiana King

 

Mesua ferrea L.

 

Rheedia acuminata (Ruiz & Pavon) Planchon & Triana

 

Rheedia aristata Grisebach

 

Rheedia sp.

 

Rheedia edulis (Seemann) Triana et Planchon

 

Rheedia macrophylla Planchon & Triana

 

Combretaceae

 

Bucida (B. spinosa x buceras)

 

Bucida buceras L.

 

Combretum aubletii de Candolle

 

Combretum obovatum F. Hoffmann

 

*Conocarpus erectus L.

 

Laguncularia racemosa (L.) Gaertner f.

 

Terminalia muelleri Bentham

 

Terminalia catappa L.

 

Ebenaceae

 

Diospyros digyna Jacquin

 

Diospyros mespiliformis Hochstetter

 

Elaeocarpaceae

 

Elaeocarpus decipiens Hemsley

 

Erythoxylaceae

 

Erythoxylum reticulatum

 

Euphorbiaceae

 

Acalypha godseffiana Sander ex Mast

 

Acalypha hispida Burman f.

 

Acalypha wilkesiana J. Mueller

 

Antidesma bunius (L.) K. Sprengel

 

Antidesma dallachyanum Baillon

 

Antidesma platyphyllum Hame

 

Bridelia monoica (L.) Merrill

 

Chamaesyce hirta L.

 

Euphorbia leucocephala Lotsy

 

Flueggea acidoton (L.) G. L. Webster

 

Jatropha integerrima Jacquin

 

Mallotus philippinensis (Lamarck) Mueller Argoviensis

 

Fabaceae

 

Acacia auriculiformis Bentham

 

Acacia choriophylla Bentham

 

Acacia farnesiana (L.) Willdenow

 

Albizia lebbek (L.) Bentham

 

Amorpha herbacea (Walt.) var. crenulata (Rydb.) Isely

 

Archidendron lucyi F. V. Mueller

 

Bauhinia sp.

 

Brya ebenus (L.) de Candolle

 

Butea monosperma (Lamarck) Taubert

 

Caesalpinia pulcherrima (L.) Swartz

 

Caesalpinia violacea (Miller) Standley

 

Cajanus cajan (L.) Huth

 

Calliandra emarginata (Humboldt & Bonpland) Bentham

 

Calliandra haematocephala Hasskarl

 

Calliandra surinamensis Bentham

 

Dalbergia ecastaphylum (L.) Taubert

 

Dalbergia sissoo de Candolle

 

Dalea carthagenensis (Jacq.) J.F. Macbride

 

Gigasiphon macrosiphon (Harms) Brenan

 

Inga affinis de Candolle

 

Inga edulis (Martius)

 

Leucaena leucocephala (Lamarck) de Wit

 

Lonchocarpus sp.

 

*Lysiloma latisiliqua (L.) Bentham

 

Lysiloma sabicu Bentham

 

Parmentiera aculeata (Kunth) Seemann

 

Peltophorum pterocarpum (de Candolle) K. Heyne

 

Pithecellobium flexicaule (Bentham) J.M. Coulter

 

Pithecellobium keyense ex Britton & Rose

 

Pongamia pinnata (L.) Pierre

 

Pseudosamanea cubana Britton & Rose (Barneby & Grimes)

 

Samanea saman (Jacquin) Merrill

 

Wallaceodendron celebicum Koorders

 

Fagaceae

 

*Quercus geminata Small

 

Quercus hemiphaerica Bartram Ex Willdenow

 

Quercus incana W. Bartram

 

*Quercus laurifolia Michaux

 

*Quercus virginiana Miller

 

Flacourtiaceae

 

Banara vanderbiltii Urban

 

Casearia arguta Humboldt, Bonpland & Kunth

 

Dovyalis hebecarpa (G. Gardner) Warburg

 

Lamiaceae

 

Leonotis leonurus (L.) R. Brown

 

Leonotis nepetifolia (L.) R. Brown

 

Ocimum sp.

 

Rosmarinus officinalis L.

 

Salvia coccinea P.J. Buchoz ex Etlinger

 

Solenostemon scutellarioides (L.) Codd

 

Lauraceae

 

Cinnamomum zeylanicum Blume

 

Laurus nobilis L.

 

*Licaria triandra (Swartz) Kostermans

 

Ocotea coriacea (Swartz) Britton (Lauraceae)

 

Persea americana Miller

 

*Persea borbonia (L.) Sprengel

 

Persea palustris (Rafinesque-Schmaltz) Sargent

 

Lecythidaceae

 

Lecythis minor Jacquin

 

Lythraceae

 

Ginoria glabra Grisebach

 

Ginoria nudiflora (Hemsley) Koehne

 

Lagerstroemia indica L.

 

Lagerstroemia speciosa (L.) Persoon (Lythraceae)

 

Lawsonia inermis L.

 

Magnoliaceae

 

Magnolia virginiana L.

 

Michelia champaca L.

 

Malvaceae

 

Abutilon sp.

 

Durio testudinarium

 

Heritiera littoralis Dryander

 

Hibiscus rosa-sinensis L.

 

Hibiscus schizopetalus (Masters) Hooker f.

 

Hibicus tiliaceus L.

 

Malvaviscus penduliflorus de Candolle

 

Pavonia bahamensis Hitchcock

 

Pavonia paludicola D. H. Nicolson

 

Ruizia cordata Cavanilles

 

Trichospermum mexicanum (de Candolle) Baillon

 

Urena lobata L.

 

Melastomataceae

 

Tetrazygia bicolor (Miller) Cogniaux

 

Meliaceae

 

Lansium domesticum Corrêa da Serra

 

Moraceae

 

Brosimum alicastrum Swartz

 

Ficus aspera G. Forster

 

*Ficus aurea Nuttall

 

Ficus benjamina L.

 

Ficus capensis Thunberg

 

Ficus citrifolia Miller

 

Ficus deltoidea Jack

 

Ficus elastica L.

 

Ficus microcarpa L. f.

 

Ficus natalensis Hochstetter

 

Ficus nota (Blanco) Merrill

 

Ficus pertusa L.

 

Ficus pumila L.

 

Ficus racemosa L.

 

Ficus rubiginosa Desfontaines ex Ventenat

 

Ficus rumphii Blume

 

Ficus salicifolia (Vahl) Berg

 

Ficus subcordata Blume

 

Ficus virens Aiton

 

Myricaceae

 

*Myrica cerifera L.

 

Myrsinaceae

 

*Ardisia escallonioides Chamisso & Schlechtendal

 

Ardisia hirtella

 

Ardisia revoluta Humbolt, Bonfland & Kunth

 

Ardisia sieboldii Miquel

 

Rapanea punctata (Lamarck) Lundell

 

Myrtaceae

 

Callistemon viminalis (Gaertner) Cheel

 

*Calyptranthes pallens Grisebach

 

Calyptranthes thomasiana O. Berg

 

*Calyptranthes zuzygium (L.) Swartz

 

Eucalyptus bella K. D. Hill & L. A. S. Johnson

 

*Eugenia axillaris (Swartz) Willdenow

 

Eugenia brasiliensis Lamarck

 

*Eugenia confusa de Candolle

 

Eugenia foetida Persoon

 

Eugenia luschnathiana Klotzsch ex O. Berg

 

Eugenia uniflora L.

 

Marliera edulis Cambessedes

 

Melaleuca bracteata F. Mueller

 

Melaleuca decora (Salisbury) Britten

 

Melaleuca quinquenervia (Cavanilles) S.T. Blake

 

Mosiera longipes (O. Berg) Small

 

Myrcianthes fragrans

 

Myrciaria cauliflora (de Candolle) O. Berg in Martius

 

Myrciaria vexator McVaugh

 

Pimenta dioica (L.) Merrill

 

Pimenta racemosa (Miller) J. W. Moore

 

Psidium androsianum (Urban) Correll

 

Psidium guajava L.

 

Psidium littorale Raddi

 

Syzigium cuminii (L.) Skeels

 

Syzygium grande (Wight) Walpers

 

Syzygium jambos (L.) Alston

 

Syzygium malaccense (L.) Merrill & Perry

 

Syzygium paniculatum Gaertner

 

Syzygium samarangense (Blume) Merrill & Perry

 

Onagraceae

 

Ludwigia peruviana (L.) Hara

 

Orchidaceae

 

Dendrobium aphyllum (Roxb.) C.E.C. Fischer

 

Averrhoa bilimbi L.

 

Averrhoa carambola L.

 

Piperaceae

 

Piper sp.

 

Polygalaceae

 

Polygala cowellii (Britton) Blake

 

Polygonaceae

 

Antipogon leptopus Hooker & Arnott

 

Triplaris cumingiana Fischer & C.A. Meyer ex C.A. Meyer

 

Proteaceae

 

Macadamia integrifolia Maiden & Betche

 

Macadamia tetraphylla L. A. S. Johnson

 

Rhamnaceae

 

*Krugiodendron ferreum (Vahl) Urban

 

Ziziphus mauritiana Lamarck

 

Rhizophoraceae

 

Rhizophora mangle (L.)

 

Roseaceae

 

Malus sylvestris Miller

 

Pyrus sp.

 

Rosa sp.

 

Rubiaceae

 

Erithalis fruticosa L.

 

Gardenia jasminoides Ellis

 

Gardenia thunbergia L.f.

 

Hamelia cuprea Grisebach

 

*Hamelia patens Jacquin

 

Ixora sp.

 

Mussaenda erythrophylla Schumacher & Thonning

 

Pentas lanceolata (Forsskal) Deflers

 

*Psychotria ligustrifolia (Northrup) Millspaugh

 

*Psychotria nervosa Swartz

 

Psychotria punctata Vatke

 

Psychotria sulzneri Small

 

Psychotria viridis

 

Randia aculeata L.

 

Rondeletia leucophylla Kunth

 

Spermacoce verticillata L.

 

Rutaceae

 

Amyris balsamifera L.

 

Amyris elemifera L.

 

Citrus X paradisi Macfadyen

 

Clausena lansium (Loureiro) Skeels

 

Evodia ridleyi Hochreutiner

 

Fortunella japonica (Thunberg) Swingle

 

Murraya paniculata (L.) Jack

 

Salicaceae

 

*Salix caroliniana Michaux

 

Sapindaceae

 

Alectryon coriaceus Radlkofer

 

Allophylus cominia (L.) Swartz

 

Blighia sapida Konig

 

Cupaniopsis anacardioides (A. Richard) Radlkofer

 

Dodonaea viscosa Jacquin

 

*Exothea paniculata (Jussieu) Radlkofer

 

Filicium decipiens (Wight & Arnott) Thwaites

 

Harpullia arborea (Blanco) Radlkofer

 

Hypelate trifoliata Swartz

 

Koelreuteria elegans (Seemann) A.C. Smith

 

Litchi chinensis Sonnerat

 

Melicocca bijuga L.

 

Talisia olivaeformis (Humboldt, Bonpland & Kunth) Radlkofer

 

Sapotaceae

 

*Bumelia celastrina Humboldt, Bonpland & Kunth

 

Calvaria inermis

 

Chrysophyllum cainito L.

 

*Chrysophyllum oliviforme L.

 

*Dipholis salicifolia (L.) Alphonse de Candolle

 

*Manilkara jaimiqui (C. Wright) Dubard

 

Manilkara kauki (L.) Dubard

 

Manilkara pleeana (Pierre) Cronquist

 

Manilkara roxburghiana (Wight) Dubard

 

Manilkara zapota (L.) Van Royen

 

Mimusops balata (Aublet) Gaertner

 

Mimusops caffra A. de Candolle

 

Mimusops elengi L.

 

Pouteria caimito Radlkofer

 

Sideroxylon americanum (Miller) T. D. Penn

 

Sideroxylon foetidissimum Jacquin

 

Sideroxylon salicifolium (L.) Lam.

 

Synsepalum dulcificum Schumacher & Thonning

 

Solanaceae

 

Brunfelsia lactea Krug & Urban

 

Brunfelsia nitida Bentham

 

Cestrum diurnum L.

 

Cestrum nocturnum L.

 

Solanum diphyllum L.

 

Solanum tampicense Dunal

 

Solanum torvum Swartz

 

Sterculiaceae

 

Sterculia ceramica R. Brown

 

Pterospermum acerifolium (L.) Willdenow

 

Tiliaceae

 

Grewia occidentalis L.

 

Grewia occidentalis L.

 

Theophrastaceae

 

Jacquinia armillaris Jacquin

 

Jacquinia aurantiaca Aiton

 

Urticaceae

 

Pouzolzia zeylanica (L.) Bennett

 

Verbenaceae

 

Avicennia germinans (L.) L.

 

Callicarpa americana L.

 

Duranta erecta L.

 

Petrea volubilis Jacquin

 

Vitaceae

 

*Parthenocissus quinquefolia (L.) Planchon

 

Vitis rotundifolia Michaux

 

Zygophyllaceae

 

Guaiacum officinale L.

 

Guaiacum sanctum L.

Angiosperms: monocotyledons

 

Palmae

 

Phoenix roebelenii O'Brien

Gymnosperms: Coniferales

 

Cupressaceae

 

Juniperus virginiana L.

Taxodiaceae

 

Taxodium distichum (L.) L. Richter

Footnotes

1.

This document is EENY-309 (IN586), one of a series of Featured Creatures from the Entomology and Nematology Department, UF/IFAS Extension. Publicación septiembre 2003. Revised febrero 2008 y febrero 2014. This document is also available on Featured Creatures website at http://entomology.ifas.ufl.edu/creatures. Please visit the EDIS website at http://edis.ifas.ufl.edu. Additional information on these organisms, including many color photographs, is available at the Entomology and Nematology Department website at http://entnemdept.ifas.ufl.edu/.

2.

F. W. Howard, University of Florida; Robert Pemberton, USDA; Avas Hamon, Division of Plant Industry; Greg S. Hodges, Division of Plant Industry; Catharine M. Mannion, University of Florida; David McLean, Broward Community College and Nova Southeastern University; and Jeanette Wofford, Cooper City Arborist, Traductor (Inglés a Español). F. W. Howard Versión en español revisada por Juan Sebastián Ortiz, Loreto Castro (University of Florida), y Rosalinda Leidi (USDA, ARS).


The Institute of Food and Agricultural Sciences (IFAS) is an Equal Opportunity Institution authorized to provide research, educational information and other services only to individuals and institutions that function with non-discrimination with respect to race, creed, color, religion, age, disability, sex, sexual orientation, marital status, national origin, political opinions or affiliations. For more information on obtaining other UF/IFAS Extension publications, contact your county's UF/IFAS Extension office.

U.S. Department of Agriculture, UF/IFAS Extension Service, University of Florida, IFAS, Florida A & M University Cooperative Extension Program, and Boards of County Commissioners Cooperating. Nick T. Place, dean for UF/IFAS Extension.